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蛋白(KLH;BSA;OVA)偶联技术方法

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发表时间:2023-08-09 12:44

                                       常见的三种多肽/小分子等偶联蛋白的技术方法

一、SH介导多肽与载体偶联(SMCC;Sulfo-SMCC法)

1.   载体蛋白(KLH/BSA/OVA)与sulfo-SMCC的偶联 (以偶联20mg多肽为例,根据实验实际偶联量,所有试剂体积作同比缩放)

1.1 称取20mg载体蛋白,溶于2ml超纯水,配成【10 mg/ml蛋白溶液】。

1.2 称取10 mg Sulfo-SMCC于2ml超纯水配成【5mg/ml Sulfo-SMCC溶液】。

1.3 将以上两种溶液等体积混匀,室温(25℃)反应60 min或者37℃反应30 min,磁力搅拌器慢速均匀搅动反应,避免产生气泡。

1.4 反应完后将以上反应溶液装入10kD透析袋,在PBS(pH7.2)溶液中透析除去过多Sulfo-SMCC,每隔3h换液,至少换3~4次,确保透析完全,即为【活化的带有烯烃结构的SMCC蛋白载体】,除了透析也可以通过分子筛提纯活化载体蛋白。

2. 多肽的偶联

2.1 Ellman试剂法检测多肽-SH状态:

方法:在96孔酶标板中,10μl多肽+100μl Ellman试剂,用分光光度计在96孔酶标板中412nm进行测量, OD>0.15时,多肽SH正常,如果OD<0.15,说明多肽被氧化或者自我交联,不可使用。偶联完成之后,透析前用上述同样方法检测DO<0.03时,说明多肽已经80%以上全部偶联,可继续添加多肽;如果OD>0.03,说明多肽过量未全部偶联。如果没有Nano分光光度计,直接观察颜色,颜色变黄,说明游离—SH过量。

2.2 称取20mg多肽溶解于5ml交联缓冲液(0.1M PB,0.15MNaCl)中,配成【4mg/ml的多肽溶液】(对于难溶肽,可用≤30%的DMSO溶解),一般我们只偶联5~10mg多肽,等比例缩小体积即可。

2.3 将第1.4步透析好的载体蛋白与第5步配好的【4mg/ml多肽溶液】混合,室温(25℃)4h。(此处可检测多肽是否偶联充分,检测方法见2.1 Ellman试剂法检测多肽-SH状态)

2.4 最后用10kD的透析袋于PBS(pH7.2)中透析除去游离未偶联的多肽,至少换液4次。每次2h,磁力搅拌器上搅拌透析,调整到合适浓度分装成小管,-20℃保存。

3.Ellman试剂检测多肽-SH状态评估载体与多肽偶联效率

方法见“2.1 Ellman试剂法检测多肽-SH状态”。


二、EDC或EDC/NHS介导多肽与载体偶联

1. 将载体蛋白(KLH/BSA/OVA)溶解在偶联缓冲液(0.1M MES,pH4.7),终浓度10mg/ml。

2. 将待偶联多肽溶解在偶联缓冲液(0.1M MES,pH4.7),终浓度4mg/ml。

3. 将步骤1)和步骤2)的溶液混合,多肽与载体蛋白摩尔比为10:1。

4. 将EDC试剂溶解在偶联缓冲液(0.1M MES,pH4.7)中配制成1MEDC溶液。

5. 步骤3的混合液在磁力搅拌下,缓慢滴加步骤4)的EDC溶液(EDC滴加的摩尔量与多肽相同),置25℃磁力搅拌反应2h。

(如果此过程中,产生沉淀应该减少EDC的用量直到得到可溶性溶液为止。)

6. 透析或凝胶过滤去除未偶联的多肽和EDC试剂,并置换成PBS溶液(0.01M PBS,pH7.4)。

(NHS与EDC可以显著提高偶联效率,如果采用此方案,只需要在步骤5)中加入NHS至终浓度为5mM即可。)


三、Glutaraldehyde,戊二醛法介导多肽与载体偶联

1. 将含氨基的载体蛋白溶解在偶联缓冲液(0.1M 碳酸盐,0.15M NaCl,pH8.5),终浓度2mg/ml。

2. 将待偶联多肽溶解在步骤1)的溶液中,终浓度2mg/ml左右,多肽与载体蛋白摩尔比例20:1~40:1**。

3. 在上述溶液中加入新鲜GA至中浓度为1%,4℃磁力搅拌器上反应2~4h。

(戊二醛**在通风橱操作,避免接触皮肤和眼睛。)

4. 反应完毕,在上述溶液溶液中加入硼氢化钠至终浓度为10mg/ml, 4℃磁力搅拌器上反应1h。

5. 透析或凝胶过滤去除未偶联的多肽和GA试剂,并置换成PBS溶液(0.01M PBS,pH7.4)。


温馨提醒:仅供科研,不能用于人体实验


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